煙草1-脫氧-D-木酮糖-5-磷酸還原異構(gòu)酶基因(NtDXR)的過表達(dá)研究
發(fā)布時間:2021-08-23 17:53
萜類是煙草重要的香氣物質(zhì)和前體物。為調(diào)控?zé)煵葺祁惖暮铣?將前期克隆的煙草NtDXR基因,分別進(jìn)行組織型過表達(dá)和腺毛特異性過表達(dá),經(jīng)DNA-PCR、RT-PCR、Southern Blot、GUS染色、qPCR檢測,獲得陽性株系,并進(jìn)行表型檢測、生理指標(biāo)檢測和基因表達(dá)分析。主要研究結(jié)果如下:1、將NtDXR融合綠色熒光蛋白(GFP),通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法在煙草中瞬時表達(dá)NtDXR基因,檢測煙葉表皮細(xì)胞的綠色熒光,亞細(xì)胞定位結(jié)果顯示,NtDXR基因定位于葉綠體。2、構(gòu)建NtDXR基因的組成型過表達(dá)載體(pCAMBIA-35S-NtDXR-GUS)和腺毛特異過表達(dá)載體(pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS),通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)入烤煙品種K326,經(jīng)卡那抗性篩選獲得煙株,對轉(zhuǎn)基因煙株進(jìn)行DNA-PCR、RT-PCR檢測,篩選出NtDXR過表達(dá)陽性轉(zhuǎn)基因株系。對NtDXR轉(zhuǎn)基因株系的煙葉進(jìn)行GUS染色,結(jié)果顯示,35S-NtDXR煙葉各組織均染成藍(lán)色,CYP-NtDXR煙葉只有腺毛染成藍(lán)色。3、對陽性NtDXR轉(zhuǎn)基因株系進(jìn)行Southern blot分析,結(jié)果顯示,獲得的NtDXR組成...
【文章來源】:河南農(nóng)業(yè)大學(xué)河南省
【文章頁數(shù)】:44 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【部分圖文】:
萜類化合物的結(jié)構(gòu)式
4發(fā)現(xiàn),如果抑止擬南芥的MVA途徑,MEP途徑就會補(bǔ)充細(xì)胞質(zhì)中MVA途徑代謝流的減少。如今我們已經(jīng)知曉,單萜、二萜、四萜以及某些異戊二烯的醌類基本通過MEP途徑在質(zhì)體中獲得,而倍半萜、三萜等大都通過細(xì)胞質(zhì)中的MVA途徑獲得[31]。但是,最近有些試驗(yàn)認(rèn)為這兩條途徑合成的萜類物質(zhì)并不是絕對不變的。比如,番茄和青蒿腺毛中的MEP途徑也能合成倍半萜[32-33],而巴豆的MEP途徑的產(chǎn)物中則出現(xiàn)了三萜[34]。MVA途徑也能合成穿心蓮內(nèi)酯(一種二萜內(nèi)酯化合物)的前體物[35]。此外,雖然IPP大多在細(xì)菌、藻類和植物體的MEP途徑形成,但在古細(xì)菌、真菌和動物體內(nèi)則是經(jīng)由MVA途徑獲得[36-37]。虛線表示由多步反應(yīng)完成圖2植物萜類生物合成的兩條途徑1.2.2MEP途徑關(guān)鍵酶研究進(jìn)展MEP途徑中研究最多的是DXS和DXR酶。DXS基因最初是在大腸桿菌中分離出來的[38],之后又從薄荷[39]、胡椒[40]以及其他細(xì)菌[41]中分離出DXR的同源基因。這幾年的探索證明,植物和細(xì)菌中存在兩個或者多個DXS基因[42],這表示該基因是以家族形式存在的[43]。金蓉等[44]已經(jīng)研究了DXS在MEP途徑中的功能、DXS的構(gòu)造、亞細(xì)胞定位、酶活性、編
164結(jié)果與分析4.1亞細(xì)胞定位DXR基因是萜類合成MEP途徑的關(guān)鍵酶,該途徑在質(zhì)體中進(jìn)行,為了了解煙草NtDXR在細(xì)胞中的定位情況,將NtDXR與GFP融合,連接在CaMV35S啟動子的下游,在煙草葉片中瞬時表達(dá),通過共聚焦激光掃描顯微鏡觀察GFP綠色熒光在細(xì)胞中的分布,確定NtDXR基因在細(xì)胞中的表達(dá)部位。如圖3示,NtDXR-GFP融合蛋白激發(fā)的綠色熒光與葉綠素激發(fā)的紅色熒光位置重合,因此NtDXR定位于葉綠體。圖3亞細(xì)胞定位圖a:融合蛋白綠色熒光;b:葉綠素自發(fā)熒光;c:合并影像;d:明場像比例尺:20μm4.2NtDXR基因在煙草中的過表達(dá)4.2.1載體檢測4.2.1.1組成型過表達(dá)載體pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS檢測將已構(gòu)建好的載體pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS進(jìn)行PCR檢測,結(jié)果如圖4A。然后用熱激法將組成型過表達(dá)載體pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS,轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌EHA105,挑取單菌落擴(kuò)大培養(yǎng)并進(jìn)行菌液PCR檢測,電泳結(jié)果見圖4B,陽性菌液可用來轉(zhuǎn)化無菌苗。圖4PCR檢測(A)M:markerDL2000;1:陰性對照;2:pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS載體(B)M:markerDL2000;1:質(zhì)粒;2:陰性對照;3-4:農(nóng)桿菌菌液4.2.1.2腺毛特異性過表達(dá)載體pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS檢測將已構(gòu)建好的載體pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS進(jìn)行PCR檢測,結(jié)果如圖5A。用熱激法將腺毛特異性過表達(dá)載體pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS,轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌EHA105,挑取單菌落擴(kuò)大培養(yǎng)并進(jìn)行菌液PCR檢測,電泳結(jié)果見圖5B,陽性菌液可用來轉(zhuǎn)化無菌苗。(A)(B)(A)(B)
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]過量表達(dá)DXR基因提高青蒿中青蒿素的含量[J]. 陳韻斐,張芳源,唐克軒. 上海交通大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)科學(xué)版). 2012(05)
[2]植物的防御性萜類揮發(fā)信號分子[J]. 吳燕,郭蘊(yùn)斐,盧山. 植物生理學(xué)報(bào). 2012(04)
[3]陽春砂DXR超表達(dá)提高轉(zhuǎn)基因煙草DXR活性及光合色素含量[J]. 劉卉,楊錦芬,詹若挺,魏潔書,朱煥秋,陳蔚文. 廣州中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào). 2012(01)
[4]煙草5-磷酸脫氧木酮糖還原異構(gòu)酶基因(dxr)的克隆和表達(dá)分析[J]. 朱曉宇,王景,趙二衛(wèi),姚姍姍,崔紅. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào). 2011(02)
[5]1-脫氧木酮糖-5-磷酸合成酶(DXS)及其編碼基因[J]. 金蓉,朱長青,徐昌杰. 細(xì)胞生物學(xué)雜志. 2007(05)
[6]植物萜類合成酶1-脫氧-D-木酮糖-5-磷酸還原異構(gòu)酶的分子結(jié)構(gòu)特征與功能預(yù)測分析[J]. 李嶸,王喆之. 植物研究. 2007(01)
[7]植物萜類生物合成相關(guān)酶類及其編碼基因的研究進(jìn)展[J]. 陳建,趙德剛. 分子植物育種. 2004(06)
[8]植物萜類化合物的生物合成途徑及其關(guān)鍵酶的研究進(jìn)展[J]. 羅永明,劉愛華,李琴,黃璐琦. 江西中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào). 2003(01)
[9]茉莉酸甲酯對紫杉醇生物合成的誘導(dǎo)作用[J]. 余龍江,朱敏,周瑩,柯鐵,梅興國. 天然產(chǎn)物研究與開發(fā). 1999(05)
[10]植物次生代謝的分子生物學(xué)及基因工程[J]. 陳曉亞,劉培. 生命科學(xué). 1996(02)
本文編號:3358325
【文章來源】:河南農(nóng)業(yè)大學(xué)河南省
【文章頁數(shù)】:44 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【部分圖文】:
萜類化合物的結(jié)構(gòu)式
4發(fā)現(xiàn),如果抑止擬南芥的MVA途徑,MEP途徑就會補(bǔ)充細(xì)胞質(zhì)中MVA途徑代謝流的減少。如今我們已經(jīng)知曉,單萜、二萜、四萜以及某些異戊二烯的醌類基本通過MEP途徑在質(zhì)體中獲得,而倍半萜、三萜等大都通過細(xì)胞質(zhì)中的MVA途徑獲得[31]。但是,最近有些試驗(yàn)認(rèn)為這兩條途徑合成的萜類物質(zhì)并不是絕對不變的。比如,番茄和青蒿腺毛中的MEP途徑也能合成倍半萜[32-33],而巴豆的MEP途徑的產(chǎn)物中則出現(xiàn)了三萜[34]。MVA途徑也能合成穿心蓮內(nèi)酯(一種二萜內(nèi)酯化合物)的前體物[35]。此外,雖然IPP大多在細(xì)菌、藻類和植物體的MEP途徑形成,但在古細(xì)菌、真菌和動物體內(nèi)則是經(jīng)由MVA途徑獲得[36-37]。虛線表示由多步反應(yīng)完成圖2植物萜類生物合成的兩條途徑1.2.2MEP途徑關(guān)鍵酶研究進(jìn)展MEP途徑中研究最多的是DXS和DXR酶。DXS基因最初是在大腸桿菌中分離出來的[38],之后又從薄荷[39]、胡椒[40]以及其他細(xì)菌[41]中分離出DXR的同源基因。這幾年的探索證明,植物和細(xì)菌中存在兩個或者多個DXS基因[42],這表示該基因是以家族形式存在的[43]。金蓉等[44]已經(jīng)研究了DXS在MEP途徑中的功能、DXS的構(gòu)造、亞細(xì)胞定位、酶活性、編
164結(jié)果與分析4.1亞細(xì)胞定位DXR基因是萜類合成MEP途徑的關(guān)鍵酶,該途徑在質(zhì)體中進(jìn)行,為了了解煙草NtDXR在細(xì)胞中的定位情況,將NtDXR與GFP融合,連接在CaMV35S啟動子的下游,在煙草葉片中瞬時表達(dá),通過共聚焦激光掃描顯微鏡觀察GFP綠色熒光在細(xì)胞中的分布,確定NtDXR基因在細(xì)胞中的表達(dá)部位。如圖3示,NtDXR-GFP融合蛋白激發(fā)的綠色熒光與葉綠素激發(fā)的紅色熒光位置重合,因此NtDXR定位于葉綠體。圖3亞細(xì)胞定位圖a:融合蛋白綠色熒光;b:葉綠素自發(fā)熒光;c:合并影像;d:明場像比例尺:20μm4.2NtDXR基因在煙草中的過表達(dá)4.2.1載體檢測4.2.1.1組成型過表達(dá)載體pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS檢測將已構(gòu)建好的載體pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS進(jìn)行PCR檢測,結(jié)果如圖4A。然后用熱激法將組成型過表達(dá)載體pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS,轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌EHA105,挑取單菌落擴(kuò)大培養(yǎng)并進(jìn)行菌液PCR檢測,電泳結(jié)果見圖4B,陽性菌液可用來轉(zhuǎn)化無菌苗。圖4PCR檢測(A)M:markerDL2000;1:陰性對照;2:pCAMBIA-35S-NtDXR–GUS載體(B)M:markerDL2000;1:質(zhì)粒;2:陰性對照;3-4:農(nóng)桿菌菌液4.2.1.2腺毛特異性過表達(dá)載體pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS檢測將已構(gòu)建好的載體pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS進(jìn)行PCR檢測,結(jié)果如圖5A。用熱激法將腺毛特異性過表達(dá)載體pCAMBIA1391-CYP-NtDXR-GUS,轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌EHA105,挑取單菌落擴(kuò)大培養(yǎng)并進(jìn)行菌液PCR檢測,電泳結(jié)果見圖5B,陽性菌液可用來轉(zhuǎn)化無菌苗。(A)(B)(A)(B)
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]過量表達(dá)DXR基因提高青蒿中青蒿素的含量[J]. 陳韻斐,張芳源,唐克軒. 上海交通大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)科學(xué)版). 2012(05)
[2]植物的防御性萜類揮發(fā)信號分子[J]. 吳燕,郭蘊(yùn)斐,盧山. 植物生理學(xué)報(bào). 2012(04)
[3]陽春砂DXR超表達(dá)提高轉(zhuǎn)基因煙草DXR活性及光合色素含量[J]. 劉卉,楊錦芬,詹若挺,魏潔書,朱煥秋,陳蔚文. 廣州中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào). 2012(01)
[4]煙草5-磷酸脫氧木酮糖還原異構(gòu)酶基因(dxr)的克隆和表達(dá)分析[J]. 朱曉宇,王景,趙二衛(wèi),姚姍姍,崔紅. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào). 2011(02)
[5]1-脫氧木酮糖-5-磷酸合成酶(DXS)及其編碼基因[J]. 金蓉,朱長青,徐昌杰. 細(xì)胞生物學(xué)雜志. 2007(05)
[6]植物萜類合成酶1-脫氧-D-木酮糖-5-磷酸還原異構(gòu)酶的分子結(jié)構(gòu)特征與功能預(yù)測分析[J]. 李嶸,王喆之. 植物研究. 2007(01)
[7]植物萜類生物合成相關(guān)酶類及其編碼基因的研究進(jìn)展[J]. 陳建,趙德剛. 分子植物育種. 2004(06)
[8]植物萜類化合物的生物合成途徑及其關(guān)鍵酶的研究進(jìn)展[J]. 羅永明,劉愛華,李琴,黃璐琦. 江西中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào). 2003(01)
[9]茉莉酸甲酯對紫杉醇生物合成的誘導(dǎo)作用[J]. 余龍江,朱敏,周瑩,柯鐵,梅興國. 天然產(chǎn)物研究與開發(fā). 1999(05)
[10]植物次生代謝的分子生物學(xué)及基因工程[J]. 陳曉亞,劉培. 生命科學(xué). 1996(02)
本文編號:3358325
本文鏈接:http://sikaile.net/nykjlw/nzwlw/3358325.html
最近更新
教材專著