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黑果腺肋花楸花色苷提

發(fā)布時間:2024-03-09 22:33
  黑果腺肋花楸中花色苷含量豐富,可作為天然色素的新來源。為提高黑果腺肋花楸的利用度,本文采用纖維素酶酶解-乙醇提取技術(shù)提取花色苷,并優(yōu)化提取條件;借助AB-8大孔樹脂對花色苷粗提物進行分離純化,通過研究靜態(tài)和動態(tài)吸附解吸條件,優(yōu)化純化工藝;通過測定花色苷對DPPH自由基和羥自由基的清除能力,評價花色苷的抗氧化活性;建立H2O2誘導的HepG2細胞氧化損傷模型,探究花色苷對細胞氧化損傷的保護作用和機制。主要研究結(jié)果如下:1.通過單因素和響應(yīng)面設(shè)計確定酶解-溶劑提取的最優(yōu)條件為:酶用量0.03%,酶處理溫度51.76℃,酶處理時間1.29 h。在此條件下,花色苷提取量為3.16 mg/g,與簡單醇提法相比,提高了 45.24%,說明纖維素酶能顯著提高黑果腺肋花楸花色苷的提取量。2.選用AB-8大孔樹脂對粗品花色苷進行分離純化,通過研究靜態(tài)-動態(tài)吸附解吸條件,確定最佳純化條件為:上樣液濃度10.51 mg/mL,上樣液pH 2.0,上樣液流速1.5 mg/mL,上樣量12 BV(柱體積),水洗量為7BV,乙醇濃度90%,洗脫所需乙醇量為2 BV。在該條件下,純化后樣品為紫黑色粉末,花色苷含量為...

【文章頁數(shù)】:70 頁

【學位級別】:碩士

【文章目錄】:
摘要
Abstract
1 引言
    1.1 黑果腺肋花楸的研究進展
        1.1.1 黑果腺肋花楸簡介
        1.1.2 黑果腺肋花楸主要營養(yǎng)物質(zhì)及生理功能
        1.1.3 黑果腺肋花楸的開發(fā)現(xiàn)狀
    1.2 花色苷的概述
        1.2.1 花色苷的結(jié)構(gòu)及化學性質(zhì)
        1.2.2 花色苷的提取方法
        1.2.3 花色苷的純化方法
    1.3 研究的目的、意義及內(nèi)容
        1.3.1 研究目的和意義
        1.3.2 研究內(nèi)容
    1.4 技術(shù)路線
2 黑果腺肋花楸花色苷的提取工藝研究
    2.1 材料、試劑與儀器
        2.1.1 材料
        2.1.2 試劑
        2.1.3 儀器
    2.2 實驗方法
        2.2.1 花色苷含量的測定
        2.2.2 單因素實驗
        2.2.3 響應(yīng)面設(shè)計
        2.2.4 數(shù)據(jù)處理
    2.3 結(jié)果與分析
        2.3.1 花色苷紫外可見光譜結(jié)果分析
        2.3.2 單因素實驗結(jié)果與分析
        2.3.3 響應(yīng)面設(shè)計與分析
    2.4 本章小結(jié)
3 黑果腺肋花楸花色苷純化工藝研究
    3.1 材料、試劑與儀器
        3.1.1 材料與試劑
        3.1.2 儀器
    3.2 實驗方法
        3.2.1 黑果腺肋花楸花色苷粗提物的制備
        3.2.2 AB-8大孔樹脂的預處理
        3.2.3 花色苷吸收光譜與工作曲線
        3.2.4 AB-8大孔樹脂靜態(tài)吸附與解吸
        3.2.5 AB-8大孔樹脂動態(tài)吸附與解吸
        3.2.6 AB-8大孔樹脂對黑果腺肋花楸花色苷的純化效果
        3.2.7 數(shù)據(jù)處理
    3.3 結(jié)果與分析
        3.3.1 花色苷吸收光譜和標準曲線的建立
        3.3.2 最佳純化工藝的確定
        3.3.3 AB-8大孔樹脂對黑果腺肋花楸花色苷的純化效果
    3.4 本章小結(jié)
4 黑果腺肋花楸花色苷抗氧化性研究
    4.1 材料、試劑與儀器
        4.1.1 材料
        4.1.2 試劑
        4.1.3 儀器
    4.2 實驗方法
        4.2.1 黑果腺肋花楸花色苷抗氧化活性研究
        4.2.2 細胞復蘇
        4.2.3 細胞培養(yǎng)與傳代
        4.2.4 細胞凍存
        4.2.5 細胞計數(shù)
        4.2.6 MTT法測定花色苷對細胞存活率的影響
        4.2.7 H2O2誘導HepG2細胞氧化損傷模型的建立
        4.2.8 花色苷對H2O2誘導的HepG2細胞氧化損傷的影響
        4.2.9 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡
        4.2.10 數(shù)據(jù)處理
    4.3 結(jié)果與分析
        4.3.1 花色苷的抗氧化活性
        4.3.2 花色苷對HepG2細胞存活率的影響
        4.3.3 H2O2誘導HepG2細胞的氧化損傷
        4.3.4 花色苷對玩H2O2誘導的HepG2細胞氧化損傷的影響
        4.3.5 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡
    4.4 本章小結(jié)
5 結(jié)論與展望
    5.1 結(jié)論
    5.2 展望
參考文獻
個人簡介
導師簡介
致謝



本文編號:3923962

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