土壤是陸地生態(tài)系統(tǒng)中的主要碳（C）儲庫,參與全球碳循環(huán),與全球氣候變化密切相關(guān)。土壤中的自養(yǎng)微生物能夠同化大氣中的二氧化碳（CO₂）,根據(jù)其能量來源可分為光能自養(yǎng)型和化能自養(yǎng)型,在土壤C固定過程中起到不可忽視的作用。土壤自養(yǎng)微生物固定CO₂的方式有多種,其中的卡爾文循環(huán)（Calvin-Benson-Bussham cycle）具有最高的固定效率,且廣泛存在于多數(shù)自養(yǎng)微生物中�？栁难h(huán)的限速步驟為1,5-二磷酸核酮糖羧化酶（RubisCO酶）所催化的CO₂同化過程,因此RubisCO酶活性及編碼該酶基因大亞基的cbbL基因已經(jīng)廣泛用于土壤自養(yǎng)微生物生態(tài)學(xué)的研究中。當(dāng)前,以cbbL基因和RubisCO酶活性作為分子標(biāo)識的研究表明,土壤自養(yǎng)微生物生態(tài)學(xué)特性對外界環(huán)境的干擾具有顯著的響應(yīng)特征,但關(guān)于紫色土中自養(yǎng)微生物對不同環(huán)境因子的響應(yīng)研究并不多見。鑒于此,本研究首先以連續(xù)26年（1991-2017年）的長期定位施肥中性紫色土為研究對象,結(jié)合Illumina Miseq測序探討長期施肥對該土壤自養(yǎng)細(xì)菌活性和群落結(jié)構(gòu)的影響,找出... 

【文章來源】：西南大學(xué)重慶市 211工程院校 教育部直屬院校

【文章頁數(shù)】：74 頁

【學(xué)位級別】：碩士

【文章目錄】：
摘要
Abstract
第1章 文獻(xiàn)綜述
2的固定作用及其意義">    1.1 土壤對CO₂的固定作用及其意義
        1.1.1 溫室氣體
        1.1.2 土壤固碳
    1.2 自養(yǎng)微生物概述
        1.2.1 自養(yǎng)微生物的定義和種類
        1.2.2 自養(yǎng)微生物的碳固定方式
        1.2.3 卡爾文循環(huán)的關(guān)鍵酶及基因
    1.3 土壤自養(yǎng)微生物的研究現(xiàn)狀
        1.3.1 研究土壤自養(yǎng)微生物的方法
        1.3.2 影響土壤自養(yǎng)微生物的因子
第2章 緒論
    2.1 研究目的及意義
    2.2 研究內(nèi)容
    2.3 技術(shù)路線
第3章 長期定位施肥對紫色土自養(yǎng)微生物豐度和活性的影響
    3.1 材料與方法
        3.1.1 樣地描述和土壤采集
        3.1.2 土壤蛋白質(zhì)和DNA的提取
        3.1.3 土壤RubisCO酶活力的測定及cbbL基因的定量
        3.1.4 cbbL基因的Illumina Mi Seq測序
        3.1.5 數(shù)據(jù)分析
    3.2 結(jié)果與分析
        3.2.1 不同施肥制度下土壤的理化性質(zhì)
        3.2.2 不同施肥制度下土壤的RubisCO酶活性
        3.2.3 不同施肥制度下土壤cbbL基因的豐度
        3.2.4 不同施肥制度下土壤cbbL基因群落結(jié)構(gòu)的變化
    3.3 討論
    3.4 小結(jié)
第4章 水分含量對紫色土自養(yǎng)微生物豐度與活性的影響
    4.1 材料與方法
        4.1.1 供試土壤樣品
        4.1.2 不同含水量的土壤培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)
        4.1.3 土壤蛋白的提取及RubisCO酶活性的測定
        4.1.4 土壤DNA提取和定量PCR
        4.1.5 數(shù)據(jù)處理
    4.2 結(jié)果分析
        4.2.1 不同含水量處理土壤的有機(jī)碳含量
        4.2.2 不同含水量處理土壤的cbbL豐度
        4.2.3 不同含水量處理土壤的RubisCO酶活性
        4.2.4 土壤含水量、有機(jī)碳、cbbL豐度及RubisCO酶活性間的關(guān)系
    4.3 討論
    4.4 小結(jié)
第5章 光照對不同pH紫色土自養(yǎng)微生物豐度及活性的影響
    5.1 材料和方法
        5.1.1 供試土壤
        5.1.2 培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)設(shè)計
        5.1.3 土壤呼吸速率的測定
        5.1.4 土壤蛋白的提取和RubisCO酶活性的測定
        5.1.5 土壤DNA提取及定量PCR
        5.1.6 數(shù)據(jù)處理
    5.2 結(jié)果分析
        5.2.1 不同pH紫色土光照及黑暗培養(yǎng)下的有機(jī)碳含量及呼吸速率
        5.2.2 不同 pH 紫色土光照及黑暗培養(yǎng)下的 RubisCO 酶活及 cbbL 豐度
        5.2.3 紫色土pH對 RubisCO酶活性、cbbL基因豐度、呼吸速率及有機(jī)碳的影響及其相互關(guān)系
    5.3 討論
    5.4 小結(jié)
第6章 DNA-SIP示蹤不同含硫量紫色土自養(yǎng)微生物豐度及活性
    6.1 材料和方法
        6.1.1 供試土壤
        6.1.2 同位素標(biāo)記培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)
        6.1.3 土壤呼吸速率的測定
        6.1.4 土壤DNA的提取和SIP-DNA的分離純化
        6.1.5 定量PCR
        6.1.6 土壤蛋白的提取及RubisCO酶活性的測定
        6.1.7 數(shù)據(jù)分析
    6.2 結(jié)果分析
        6.2.1 不同處理土壤有機(jī)碳含量和呼吸速率
        6.2.2 不同處理土壤RubisCO酶活性和cbbL豐度
13CO₂ 標(biāo)記DNA中的cbbL基因豐度">        6.2.3 各處理¹³CO₂ 標(biāo)記DNA中的cbbL基因豐度
    6.3 討論
    6.4 小結(jié)
第7章 結(jié)論與展望
    7.1 主要結(jié)論
    7.2 本文創(chuàng)新點(diǎn)
    7.3 研究不足和展望
參考文獻(xiàn)
致謝
發(fā)表論文及參加課題



本文編號：3014584