本文關(guān)鍵詞：聚乳酸的改性及應(yīng)用性能研究，由筆耕文化傳播整理發(fā)布。

【摘要】：聚乳酸（PLLA）由于具有良好的生物可降解性、力學(xué)性能和生物相容性，已在生物醫(yī)用材料領(lǐng)域得到較廣泛的應(yīng)用。但是，聚乳酸的表面疏水性強(qiáng)，降低了其生物相容性，在人體內(nèi)的降解周期難以控制，降解中會導(dǎo)致局部酸性積累而使植入部分出現(xiàn)非感染性炎癥，局部嚴(yán)重積水，以上性能缺陷限制了聚乳酸在生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中的應(yīng)用。為克服上述缺陷，人們對PLLA作了大量的改性研究工作，以提高親水性，改善降解性能。本文利用乙二胺和膠原蛋白對PLLA進(jìn)行了改性，研究了改性聚乳酸的親水性及降解性；以改性聚乳酸為包裹材料，制備了胰蛋白酶載藥微球，并測定了其緩釋性能，以考察改性聚乳酸在緩釋藥物體系中的應(yīng)用效果。研究的主要內(nèi)容與結(jié)果如下： (1)以PLLA和乙二胺為原材料，采用PCl5作為酰氯化試劑，將聚乳酸末端羧基酰氯化后與乙二胺反應(yīng)，制備得到乙二胺改性聚乳酸。采用紅外光譜和核磁共振氫譜對EPLA的結(jié)構(gòu)進(jìn)行了表征，結(jié)果表明乙二胺已經(jīng)引入到PLLA上，接枝率為4.3%。 (2)以膠原蛋白與EPLA為原料，DCC為縮合劑，選用直接熔融縮聚的方法制備得到膠原蛋白改性聚乳酸（CPLA）。采用紅外光譜、熒光標(biāo)記分別對CPLA進(jìn)行表征，實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，膠原蛋白已經(jīng)成功的接枝到乙二胺改性聚乳酸上。采用茚三酮定量顯色的方法確定膠原蛋白的含量是6.7%。 (3)用吸水率表征了材料的親水性能。結(jié)果表明，EPLA和CPLA的親水性明顯高于PLLA，又以CPLA的親水性最好。通過測定降解過程中的pH變化和材料的失重率表征了PLLA、EPLA和CPLA的降解性。結(jié)果表明，CPLA在降解過程中介質(zhì)逐漸呈酸性，但pH明顯高于PLLA。CPLA在降解過程中失重率變化比較平緩而PLLA則有陡降現(xiàn)象， CPLA無明顯的酸自催化現(xiàn)象造成的。 (4)以改性聚乳酸為包裹材料，采用W/O/W型溶劑揮發(fā)法制備了載胰蛋白酶性聚乳酸微球，，通過正交試驗(yàn)得到最佳制備工藝：初、復(fù)乳攪拌速度分別為14.000r/min、700r/min，PVA的濃度0.5%，胰蛋白酶的用量0.1g/min，PLLA的濃度7.5%。通過對不同材料制備的載胰蛋白酶微球的包封率、載藥量和包封率的比較，結(jié)果顯示，載胰蛋白酶CPLA微球最好，EPLA的次之。 研究了載藥微球的體外釋藥性能。結(jié)果表明，CPLA微球和EPLA微球釋藥速度小于PLLA微球，而CPLA微球的釋藥時間明顯大于PLLA微球與EPLA微球，CPLA微球的緩釋效果更佳。CPLA有望成為一種新型緩釋藥物載體材料。
【關(guān)鍵詞】：聚（L-乳酸） 乙二胺 膠原蛋白 微球 胰蛋白酶 緩釋
【學(xué)位授予單位】：齊魯工業(yè)大學(xué)
【學(xué)位級別】：碩士
【學(xué)位授予年份】：2014
【分類號】：TQ460.1
【目錄】：

• 摘要8-9
• ABSTRACT9-11
• 第1章 緒論11-21
• 1.1 聚乳酸合成的研究11-12
• 1.1.1 直接縮聚法11
• 1.1.2 間接聚合的方法11-12
• 1.2 聚乳酸改性的研究12-16
• 1.2.1 化學(xué)改性12-14
• 1.2.2 物理改性14-15
• 1.2.3 復(fù)合改性15-16
• 1.3 聚乳酸在醫(yī)學(xué)方面的用處16-17
• 1.3.1 藥物釋放材料16
• 1.3.2 骨折固定材料16
• 1.3.3 外科手術(shù)縫合16-17
• 1.4 膠原蛋白的研究17-20
• 1.4.1 膠原蛋白的概述17
• 1.4.2 膠原蛋白改性的研究17-19
• 1.4.3 膠原蛋白的應(yīng)用19-20
• 1.5 本文的主要工作及意義20-21
• 第2章 乙二胺改性聚乳酸（EPLA）的方法21-29
• 2.1 前言21-23
• 2.2 實(shí)驗(yàn)部分23-25
• 2.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器23
• 2.2.2 實(shí)驗(yàn)原料23-24
• 2.2.3 EPLA 的制備方法24
• 2.2.4 測試與表征24-25
• 2.3 結(jié)果與分析25-27
• 2.3.1 紅外光譜圖分析（FTIR）25-26
• 2.3.2 EPLA 的核磁共振 1H-NMR 譜圖分析26-27
• 2.3.3 元素分析（接枝率的測定）27
• 2.4 本章小結(jié)27-29
• 第3章 膠原蛋白改性聚乳酸（CPLA）的方法29-39
• 3.1 引言29-30
• 3.2 實(shí)驗(yàn)的原理30-31
• 3.3 實(shí)驗(yàn)部分31-35
• 3.3.1 實(shí)驗(yàn)儀器31-32
• 3.3.2 實(shí)驗(yàn)原料32-33
• 3.3.3 膠原改性聚乳酸的制備（EPLA）33
• 3.3.4 測試與表征33-35
• 3.4 結(jié)果與分析35-37
• 3.4.1 紅外光譜圖分析（FTIR）35-36
• 3.4.2 膠原蛋白的熒光分析36
• 3.4.3 CPLA 中膠原蛋白的接枝率36-37
• 3.5 本章小結(jié)37-39
• 第4章 改性聚乳酸（CPLA/EPLA）的性能研究39-47
• 4.1 前言39-40
• 4.2 實(shí)驗(yàn)部分40-42
• 4.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器40-41
• 4.2.2 實(shí)驗(yàn)原料41
• 4.2.3 材料吸水率測定方法41-42
• 4.2.4 降解性的測定方法42
• 4.3 結(jié)果與分析42-45
• 4.3.1 吸水率的測定42-43
• 4.3.2 降解性測定43-45
• 4.4 本章小結(jié)45-47
• 第5章 載胰蛋白酶微球的制備方法47-63
• 5.1 前言47
• 5.2 實(shí)驗(yàn)部分47-51
• 5.2.1 實(shí)驗(yàn)儀器47-48
• 5.2.2 實(shí)驗(yàn)原料48-49
• 5.2.3 胰蛋白酶微球的制備方法49
• 5.2.4 正交試驗(yàn)49-50
• 5.2.5 胰蛋白酶微球的顆粒分布和形貌分析50
• 5.2.6 測定微球的載藥能力、包封率50-51
• 5.2.7 對胰蛋白酶微球進(jìn)行緩釋性能測定51
• 5.3 結(jié)果與討論51-60
• 5.3.1 正交實(shí)驗(yàn)的結(jié)果與分析51-53
• 5.3.2 胰蛋白酶微球的分析53-55
• 5.3.3 胰蛋白酶微球的包封率、載能力大小測定55-58
• 5.3.4 載胰蛋白酶微球的緩釋實(shí)驗(yàn)58-60
• 5.4 本章小結(jié)60-63
• 第6章 總結(jié)63-67
• 6.1 結(jié)論63-64
• 6.2 創(chuàng)新點(diǎn)64
• 6.3 后續(xù)工作64-67
• 參考文獻(xiàn)67-75
• 致謝75-77
• 在學(xué)期間主要科研成果77

【參考文獻(xiàn)】

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  本文關(guān)鍵詞：聚乳酸的改性及應(yīng)用性能研究，由筆耕文化傳播整理發(fā)布。

本文編號：481314